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GMS150高精度氣體調控系統

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GMS150高精度氣體調控系統可以將多4種不同氣體進行精確混合。每路輸入氣體的流量使用熱式質量流量計精確測量,并由內置的質量流量控制器進行精準控制,輸出的是*混合的均質氣體。氣體輸入輸出使用Prestolok快速安全接頭,保證使用過程中的便捷性與安全性。

GMS150高精度氣體調控系統可用于二氧化碳、氮氣、一氧化碳、甲烷、氨氣以及其他氣體的濃度控制。

GMS150高精度氣體調控系統分為GMS150版和GMS150-MICRO版,其中GMS150版精度更高,GMS150-MICRO版可調控流速更大。

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應用領域:

?與植物培養箱、光養生物反應器等聯用,進行精確氣體控制培養

?模擬不同CO2濃度環境,研究溫室效應對植物/藻類的影響

?研究CO2濃度與光合作用的關系

?模擬煙氣等有害氣體對植物/藻類的影響

?研究植物/藻類對有害氣體的處理與利用

技術參數:

?測量原理:熱式質量流量測量法

?可調控氣體:空氣、氮氣、二氧化碳、氧氣、一氧化碳、甲烷、氨氣等干燥純凈、無腐蝕性、無爆炸性氣體,氣源需用戶自備

?調控通道:標配為2通道,通道1為Air-N2,通道2為CO2,多可擴展為4通道

?工作溫度:15-50℃

?輸入/輸出接頭:Parker Prestolok接頭(6mm)

?輸入壓力:3-5bar

?密封:氟化橡膠

?顯示屏:8×21字符液晶顯示屏

?尺寸:37cm×28×15cm

?供電:115-230V交流電

?可聯用儀器:FMT150藻類培養與在線監測系統、MC1000 8通道藻類培養與在線監測系統、FytoScope系列智能LED光源生長箱、用戶自行設計的培養箱或反應器(可提供氣路連接方案)等

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與FMT150藻類培養與在線監測系統聯用的GMS150

與FytoScope智能LED光源生長箱聯用的GMS150

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與中科院海洋所自行設計的培養裝置聯用的GMS150

GMS150版調控參數:

?小流量范圍:0.02 - 1 ml/min

?大流量范圍:20 - 1000 ml/min

?可定制流量范圍:可在大流量和小流量之間定制。標準配置通道1(Air-N2): 20-1000 ml/min;通道2(CO2): 0.4-20 ml/min;可調控CO2濃度0.04% - *(實際調控濃度與流量有關)

?精度:±0.5%,加全量程±0.1%(3-5ml/min為全量程±1%,<3ml/min為全量程±2%)

?穩定性:<全量程±0.1%(參考1ml/min N2

?穩定時間:1~2s

?預熱時間:30min預熱達到精度,2min預熱偏差±2%

?溫度靈敏度:<0.05%/℃

?壓力靈敏度:0.1%/bar(參考N2

?姿態靈敏度:1bar 壓力下與水平面保持90°大*.2%(參考N2

?重量:7kg

GMS150-MICRO版調控參數:

?小流量范圍:0.2 - 10 ml/min

?大流量范圍:100 - 5000 ml/min

?可定制流量范圍:可在大流量和小流量之間定制。標準配置通道1(Air-N2): 40-2000 ml/min;通道2(CO2): 0.8-40 ml/min;可調控CO2濃度0.04% - *(實際調控濃度與流量有關)

?精度:±1.5%,加全量程±0.5%

?重復性:流量<20 ml/min為全量程±0.5%,流量>20 ml/min為實際流量±0.5%

?穩定時間:1s

?預熱時間:30min預熱達到精度,2min預熱偏差±2%

?溫度靈敏度:零點<0.01%/℃,滿度<0.02%/℃

?姿態靈敏度:1bar 壓力下與水平面保持90°大*.5 ml/min(參考N2

?重量:5kg

應用案例:

與FMT150藻類培養與在線監測系統聯用研究藍藻Cyanothece sp. ATCC 51142 的超日代謝節律(Cerveny, 2013, PNAS)

產地:歐洲

參考文獻:

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2.Suka?ová K, et al. 2019. Optimization of microalgal growth and c*tion parameters for increasing bioenergy potential: Case study using the oleaginous microalga Chlorella pyrenoidosa Chick (IPPAS C2). Algal Research 40: 101519

3.Cordara A, et al. 2018. Analysis of the light intensity dependence of the growth of Synechocystis and of the light distribution in a photobioreactor energized by 635 nm light. PeerJ, 6:e5256, DOI 10.7717/peerj.5256

4.Cordara A, et al. 2018. Response of the thylakoid proteome of Synechocystis sp. PCC 6803 to photohinibitory intensities of orange-red light. Plant physiology and biochemistry, 132: 524-534

5.Alphen P, et al. 2018. Increasing the Photoautotrophic Growth Rate of Synechocystis sp. PCC 6803 by Identifying the Limitations of Its C*tion. Biotechnology Journal 13(8): 700764

6.Sarayloo E, et al. 2018. Enhancement of the lipid productivity and fatty acid methyl ester profile of Chlorella vulgaris by two rounds of mutagenesis. Bioresource Technology, 250: 764-769

7.Mitchell M C, et al. 2017. Pyrenoid loss impairs carbon-concentrating mechanism induction and alters primary metabolism in Chlamydomonas reinhardtii. Journal of Experimental Botany, 68(14): 3891-3902

8.Hulatt C J, et al. 2017. Polar snow algae as a valuable source of lipids? Bioresource Technology, 235: 338-347

9.Jouhet J, et al. 2017. LC-MS/MS versus TLC plus GC methods: Consistency of glycerolipid and fatty acid profiles in microalgae and higher plant cells and effect of a nitrogen starvation. PLoS ONE 12(8): e0182423

10.Angermayr S A, et al. 2016. Culturing Synechocystis sp. Strain PCC 6803 with N2 and CO2 in a Diel Regime Reveals Multiphase Glycogen Dynamics with Low Maintenance Costs. Appl. Environ. Microbiol., 82(14):4180-4189

11.Acu?a A M, et al. 2016. A method to decompose spectral changes in Synechocystis PCC 6803 during light-induced state transitions. Photosynthesis Research, 130(1-3): 237-249


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