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人或動物體內(或胚胎)的組織，將其剪碎至1mm3的組織塊，再采用如下方法進行原代細胞
分離培養：
一、懸浮細胞的分離方法
1、將血液、羊水、胸水或腹水等懸液直接轉至離心管中，1000rpm/分鐘離心5分鐘。
2、去掉上清，離心沉淀用無鈣、鎂的PBS清洗后1000rpm/分鐘離心5分鐘。此步重復兩次。
3、用培養基重懸，調整適當細胞濃度后分瓶培養。
4、如選用懸液中某種細胞，可采用離心后的細胞分層液收獲目的細胞。
二、實體組織材料的分離方法
(一)機械分散法
1、纖維成分很少的腦組織，部分胚胎組織，用剪刀剪碎至1mm3的組織塊。
2、用PBS清洗兩次后
①用吸管吹打，分散組織細胞。
②或將已充分剪碎分散的組織放在注射器內(用九號針)，使細胞通過針頭壓出。
?、刍蛟诓讳P鋼紗網內用鈍物(注射器鈍端)壓擠使細胞從網孔中壓擠出。
3、收集細胞轉入離心管中，1000rpm/分鐘離心5分鐘。
4、去上清，加入含血清的培養基，重懸后移至培養瓶中培養。
(二)消化分離法
1、酶消化分離法(過夜冷消化法)
?、偌毎g質較少的軟組織，如肝、腎、甲狀腺、羊膜、胚胎組織、上皮組織等，用Hanks液清洗組織三次，剪成碎塊大小為4毫米左右。
?、谠儆肏anks液洗2-3次以除去血球和脂肪組織。
③加入0.25%的*，搖勻后放4℃過夜。
④次日再用Hanks液洗滌，棄去上清，共洗2-3次。
?、菁尤肷倭亢宓呐囵B基吹打分散，細胞計數，按適當的濃度分瓶培養。
2、非酶消化法(EDTA消化法)
①把組織塊剪碎，呈1mm3大小的組織塊。
?、趯⑺榻M織塊在平皿中用無鈣鎂PBS洗2-3次。
?、奂尤胂?*或膠原酶或EDTA)于37℃水浴中作用適當時間(中間可輕搖1~2次)，若組織塊膨松呈絮狀可終止，若變化不大可更換一次消化液，繼續消化直至膨松絮狀為止。
?、軛壢ド锨澹尤牒锈}、鎂離子的培養基中止消化反應，并洗滌2-3次后，加入*培養基。
⑤用吸管吹打，使細胞充分散開后用紗網過濾后分瓶培養。
(三)原代細胞培養
原代培養是直接從生物體獲取細胞進行培養。由于細胞剛剛從活體組織分離出來，故更接近于生物體內的生活狀態。這一方法可為研究生物體細胞的生長、代謝、繁殖提供有力的手段，同時也為以后傳代培養創造條件。利用此方法還可直接服務于臨床實踐。例如，用從手術中切除的腫瘤細胞進行原代培養，然后用該培養細胞進行抗癌藥物的篩選，根據腫瘤細胞對加入的*藥物的敏感性來幫助選擇有效的*方案，有可能起到增強療效、降低副作用的作用。
(四)原代細胞的傳代、保存
(1)傳代：依椐細胞的生長狀態，生長的細胞1：2或1：3進行傳代。
(2)保存：DMSO+培養液+血清
按下列順序降溫：室溫→4℃(20分鐘)→冰箱冷凍室(30分鐘)→超低溫冰箱(-80℃ 過夜)→液氮。
(五)原代細胞的復蘇
(1)取出細胞，迅速放入37℃溫水中快速解凍。
(2)吸出細胞懸液，并加10倍以上培養液。
(3)用培養液適當稀釋后接種培養瓶，放入37℃ CO2 培養箱靜置培養。
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